Mikroskopische Färbemethoden                  Zoologie

Bemerkung :
Gewebe in gepuffertem 10%igen Neutralformol fixieren.

MSB (= Martius-Scarlet-Blue)

Literatur :  
Cook, H.C.
Histological Demonstration Techniques
Butterworths, London, 1974 (P.101)

Arbeitsablauf :
1. Schnitte entparaffinieren und über die Alkoholreihe in Aqua dest. bringen.
2. Kernfärbung mit Eisenhämatoxylin nach Weigert    5 Min.
3. Kurz abspülen in Wasser.
4. Falls notwendig in 1%iger Essigsäure differenzieren, bis das Bindegewebe völlig entfärbt ist.
5. Bläuen in fließendem Leitungswasser (bzw. 0,25% NaHCO₃-Lösg.)    5 Min.
6. Spülen in Ethanol 96%ig
7. Martiusgelblösung    3 Min.
8. Spülen in Aqua dest.
9. Kristallponceau-Lösung    10 Min.
10. Abtrocknen der Objekträgerunterseite und der freien Oberfläche mit Filterpapier.
11. Beizen und differenzieren in 1%iger Phosphorwolframsäure    5 Min.
12. Spülen in Aqua dest.
13. Anilinblaulösung    1 Min.
14. Kurz eintauchen in 1%ige Essigsäure.
15. Entwässern in der Alkoholreihe, abs. Isopropanol
16. Xylol, Neutralharzeinschluß.

Ansätze :
• Martiusgelb-Lösung : 0.5g Martiusgelb werden in 95ml abs. Ethanol gelöst, anschließend werden 2.0g Phosphorwolframsäure mit 5ml Aqua dest. versetzt und zu der alkoholischen Martiusgelblösg. gegeben.
• Kristallponceau-Lösung : 1.0g Kristallponceau 6R werden in 97.5ml Aqua dest. gelöst und mit 2.5ml Eisessig versetzt.
• Anilinblau-Lösung : 0.5g Anilinblau werden in 99ml Aqua dest. gelöst und mit 1ml Eisessig versetzt
• 1%ige Phosphorwolframsäure : 1.0g Wolframatophosphorsäure werden in 99ml Aqua dest. gelöst.
• 1%ige Essigsäure : 1.0ml Eisessig mit 99ml Aqua dest. verdünnen.

© by Armin Eisner